Pathophysiologie du transport ionique

Présentation de l'équipe

Notre recherche vise à améliorer les connaissances scientifiques sur les mécanismes, les fonctions et les implications pathophysiologiques des canaux ioniques et des transporteurs contrôlant les principaux paramètres biologiques dont le métabolisme et la minéralisation. En tant que telles, nos études englobent un large éventail de questions allant des mécanismes cellulaires de base à la régulation de fonctions physiologiques et pathologiques complexes. Nous intégrons des informations provenant de données obtenues principalement grâce à nos mesures sur différents modèles (lignées cellulaires, modèles animaux et patients) et à notre étroite collaboration avec des cliniciens du CHU de Nice, mais également grâce à des consortiums nationaux (Labex ICST, ANRs) et internationaux (European COST). Les projets de l’équipe se répartissent en 2 grands axes : « Canaux ioniques et minéralisation » et « Transporteurs et métabolisme ».


Publications

Mots clés

Canaux
Echangeurs
Transporteurs
Muscle
Rein
Os
Pathologie vasculaire
Physiologie
Stress oxydatif

 

Axes de recherche

Transporteurs et métabolisme

xx
xx

Notre équipe se concentre sur l’étude du transport ionique, depuis les mécanismes moléculaires jusqu’aux implications physiologiques et pathologiques de ces transports. Un accent particulier est posé sur les relations entre transport et métabolisme et transport et stress oxydatif, ainsi que les conséquences de ces relations en physiologie et pathologie.

Nous nous intéressons d'une part aux modifications chimiques dues aux espèces réactives de l'oxygène et de l'azote et à leur impact sur la régulation des transporteurs. Une attention particulière est portée aux échangeurs Na+/H+ de la famille SLC9, indispensables au contrôle du pH cellulaire, du volume, de la prolifération, de l'équilibre salin de l'organisme et dont la perte de fonction est liée à des troubles neurodéveloppementaux.
D'autre part, nous développons des stratégies de lutte contre le stress oxydatif en diminuant son apparition grâce à l'identification de nouvelles cibles pharmacologiques, dont par exemple la voie eIF5A nouvellement identifiée, capables d'améliorer la tolérance ischémique en condition physiopathologique.

Le stress oxydatif est l'un des stress les plus délétères auxquels un organisme de mammifère doit faire face. Il provient principalement de la voie OXPHOS située dans les mitochondries et de complexes enzymatiques dans le cytosol et au niveau de la membrane plasmique. Dans des conditions physiologiques normales, les espèces réactives de l’oxygène et de l’azote (ROS & RNS) jouent un rôle fondamental dans la signalisation cellulaire alors qu'en cas de situation pathologique, comme l'ischémie, les systèmes anti-oxydants endogènes sont surchargés et les espèces réactives interagissent indistinctement avec les lipides voisins (peroxydation), protéines (nitrosylation et oxydation) ou membrane entière conduisant à des altérations métaboliques et finalement à la mort cellulaire.

Comprendre comment ces interactions modifient mécaniquement le fonctionnement des transporteurs membranaires qui contrôlent des paramètres clés, tels que le transporteur NHE1 bien connu, nous permet d'apporter des informations majeures concernant l'altération fonctionnelle de ces transporteurs liée à des modifications chimiques dues au ROS et au RNS. D'autre part, cibler le stress oxydatif est une préoccupation majeure des cliniciens car il est une cause majeure de morbidité et de mortalité dans les pathologies liées à l'ischémie que ce soit au niveau cérébral, cardiaque ou rénal.
D'un point de vue méthodologique, nous abordons cette problématique en utilisant la physiologie cellulaire, les méthodes physiques, la modélisation mathématique et les modèles précliniques in vivo. les pathologies que nous ciblons sont liées à l'invasion des cellules cancéreuses, aux troubles du spectre autistique, aux accidents vasculaires et à la transplantation d'organes.

Principaux projets en cours

  • A therapeutic target for ischemic related injuries: application in organ transplantation. ANR-KIRI (2020-2024). Collaborateurs Thierry HAUET (IRTOMIT, Poitiers), Maria DUCA (ICN, Nice).
  • Membrane Transport of Stable Isotopes. ANR ISO2MET (2019-2023). Collaborateurs Nathalie Vigier (LOV Villefranche s/mer), Yann Bouret (INPHYNI, Nice).

Canaux ioniques et minéralisation

xx
Les travaux de recherche du groupe « canaux ioniques et minéralisation » visent à étudier le rôle physiologique de protéines membranaires, canaux ioniques et transporteurs, dans des situations saines ou pathologiques selon 4 thématiques majeures.






 

Thématique 1 : Rôles de canaux potassiques dans la minéralisation.

Cet axe de recherche porte sur l’étude des canaux K+ dans le développement osseux. Cette étude s’appuie sur les cellules souches pluripotentes induites (iPSC) humaines ainsi que sur des modèles animaux. La combinaison d’analyses transcriptomiques et protéomiques des cellules de patients, et la différenciation des iPSC en cellules osseuses, nous permettront d’établir le lien entre le dysfonctionnement des canaux K+ et les manifestations dysmorphiques chez les patients.

Thématique 2 : Etude des mécanismes moléculaires de mutations naturelles sur les canaux ioniques des tissus excitables (paralysies périodiques, myotonies, syndrome myasthéniques congénital, syndrome d’Andersen, amyotrophie spinale).

Les analyses génétiques ont identifié plusieurs canaux ioniques (Na+, Ca2+, Cl-, et K+) associés à des maladies génétiques à mode de transmission autosomique dominante dont les paralysies périodiques, la paramyotonie congénitale, la myotonie, le syndrome myasthénique congénital, et le syndrome d’Andersen. Nous nous intéressons aux mécanismes moléculaires et physiologiques allant de l’identification des mutations associées aux pathologies à l’élaboration des mécanismes physiologiques pouvant expliquer les phénotypes cliniques. Nous nous appuyons sur des systèmes d’expression dans des cellules de mammifères, et sur des techniques d’électrophysiologie, biochimie, et immunohistochimie pour élucider les conséquences fonctionnelles de ces mutations.
L’Amyotrophie Musculaire Spinale (SMA) est une maladie neurodégénérative à mode de transmission autosomique récessive. La SMA est causée par une perte du gène codant pour le facteur 1 de survie du motoneurone (SMN1). Elle est caractérisée par une dégénérescence des motoneurones spinaux et une faiblesse musculaire sévère associée à une atrophie. L’étude des mécanismes de SMA grâce aux iPSC de patients SMA de type I à IV permettra de mieux comprendre la physiopathologie de la maladie ainsi que de développer et tester l’effet des stratégies thérapeutiques récemment élaborées.
Thématique 3: rôle des canaux LRRC8 et CFTR dans la physiologie humaine.

Nous visons à caractériser les fonctions et les rôles nouveaux et inattendus de CFTR et de LRRC8 (la famille de canaux à chlorure la plus récemment identifiée) de la modulation du statut oxydatif cellulaire dans le contexte de diverses conditions physiologiques et physiopathologiques telles que l’inflammation, fibrose kystique ou maladies du rein.
Thématique 4: Rôle du canal ABCC6 et du pyrophosphate dans les maladies par calcification.

Les calcifications artérielles sont un facteur de risque de morbidité et de mortalité cardiovasculaires. La calcification artérielle correspond au dépôt de cristaux d'hydroxyapatite dans les parois artérielles en raison d'un déséquilibre entre agents pro-calcifiants et anti-calcifiants. Parmi les agents anti-calcifiants, le pyrophosphate (PPi) joue un rôle majeur et sa concentration est liée à la présence d'un transporteur spécifique (ABCC6). L'objectif de ce projet clinique est de comprendre pourquoi la concentration plasmatique de PPi et l'expression / activité de ABCC6 influencent la calcification artérielle dans diverses situations pathologiques humaines.

 

Principaux projets en cours

  • Caractérisation structurale et cellulaire du canal K+ Kir2.1 impliqué dans le syndrome d’Andersen. AFM (2021-2022). Collaboratrice Catherine Vénien-Bryan (Université de la Sorbonne , Paris).
  • Développement d’un nouveau biomarqueur permettant de prédire l’évolution des calcifications artérielles dès les stades précoces de la maladie rénale chronique : le pyrophoshate. PHRC régional (2021-2024).
  • PyROphosPHate supplementation to fight ECtopic calcification in PXE. PHRC national (2020-2024).
  • Homéostasie du pyrophosphate et expression hépatique d’ABCC6. Étude pilote en transplantation hépatique. AOI CHU Nice (2017-2021).
  • Déterminants de la calcification vasculaire dans l’insuffisance rénale chronique: impact du taux de pyrophosphate apres greffe rénale. AOI CHU Nice (2017-2021).
Membres de l'équipe
COUNILLON Laurent, PR1 Université Côte d'Azur, Responsable de l'équipe et de l'axe "Transporteurs et métabolisme"
DURANTON Christophe, DR2 CNRS, Co-responsable de l'équipe
BENDAHHOU Saïd, DR2 CNRS, responsable groupe "Canaux ioniques et minéralisation"

BARHANIN Jacques, DRHC Emérite CNRS
CARCY Romain, Thèse, Médecin CHU Nice
CLOTAIRE Laëtitia, Thèse Cifre
COUGNON Marc, MCU Université Côte d'Azur
DOYEN Denis, Thèse, Médecin CHU Nice
FAVRE Guillaume, PU-PH CHU Nice
GUILBAULT Samuel, ITA CDD CNRS
GUINAMARD Rodolphe, CR1 CNRS
LAURAIN Audrey, Thèse, Médecin CHU Nice
LEFTHERIOTIS Georges, PU-PH CHU Nice
PISANI Didier, CR1 CNRS
POET Malorie, CR1 CNRS
PUMA Angela, Thèse, Médecin CHU Nice
RUBERA Isabelle, CR1 CNRS
TAUC Michel, DR2 INSERM
VAN OBBERGHEN Emmanuel, PU-PH CHU Nice
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Partenaires

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Publications
  • Carcy R, Cougnon M, Poet M, Durandy M, Sicard A, Counillon L, Blondeau N, Hauet T, Tauc M, Pisani DF. Targeting oxidative stress, a crucial challenge in renal transplantation outcome. Free Radical Biology and Medicine. 2021 April. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.04.023.
  • Favre G, Legueult K, Pradier C, Raffaelli C, Ichai C, Iannelli A, Redheuil A, Lucidarme O, Esnault V. Visceral fat is associated to the severity of COVID-19. Metabolism. 2021 Feb; 15. doi: 10.1016/j.metabol.2020.154440.
  • Cougnon M, Carcy R, Melis N, Rubera I, Duranton C, Dumas K, Tanti JF, Pons C, Soubeiran N, Shkreli M, Hauet T, Pellerin L, Giraud S, Blondeau N, Tauc M, Pisani DF. Inhibition of eIF5A hypusination reprogrammes metabolism and glucose handling in mouse kidney. Cell Death Dis. 2021 Mar 7;12(4):283. doi: 10.1038/s41419-021-03577-z.
  • Friard J., Laurain A., Rubera I., Duranton C. LRRC8/VRAC Channels and the Redox Balance: A Complex Relationship. Cell Physiol Biochem. 2021. 55:106-118. doi:10.33594/000000341
  • Efthymiou G, Radwanska A, Grapa AI, Beghelli-de la Forest Divonne S, Grall D, Schaub S, Hattab M, Pisano S, Poet M, Pisani DF, Counillon L, Descombes X, Blanc-Féraud L, Van Obberghen-Schilling E. Fibronectin Extra Domains tune cellular responses and confer topographically distinct features to fibril networks. J Cell Sci. 2021 Feb 24;134(4):jcs252957. doi: 10.1242/jcs.252957.
  • Douguet L., Janho Dit Hreich S., Benzaquen J., Seguin L., Juhel T., Dezitter X., Duranton C., Ryffel B., Kanellopoulos J., Delarasse C., Renault N., Furman C., Homerin G., Féral C., Cherfils-Vicini J., Millet R., Adriouch S., Ghinet A., Hofman P., Vouret-Craviari V. A small-molecule P2RX7 activator promotes anti-tumor immune responses and sensitizes lung tumor to immunotherapy. Nat Commun. 2021. 12: 653.
  • Raad G, Serra F, Martin L, Derieppe MA, Gilleron J, Costa VL, Pisani DF, Amri EZ, Trabucchi M, Grandjean V. Paternal multigenerational exposure to an obesogenic diet drives epigenetic predisposition to metabolic diseases in mice. Elife. 2021 Mar 30;10:e61736. doi: 10.7554/eLife.61736.
  • Li XC, Leite APO, Zheng X, Zhao C, Chen X, Zhang L, Zhou X, Rubera I, Tauc M, Zhuo JL. Proximal Tubule-Specific Deletion of Angiotensin II Type 1a Receptors in the Kidney Attenuates Circulating and Intratubular Angiotensin II-Induced Hypertension in PT-Agtr1a-/- Mice. Hypertension. 2021 Apr;77(4):1285-1298. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.120.16336.
  • Lee HJ, Mariappan MM, Norton L, Bakewell T, Feliers D, Oh SB, Donati A, Rubannelsonkumar CS, Venkatachalam MA, Harris SE, Rubera I, Tauc M, Ghosh Choudhury G, Kahn CR, Sharma K, DeFronzo RA, Kasinath BS. Proximal tubular epithelial insulin receptor mediates high-fat diet-induced kidney injury. JCI Insight. 2021 Feb 8;6(3):e143619. doi: 10.1172/jci.insight.143619.
  • Ávalos Prado P., Häfner S., Comoglio Y., Wdziekonski B., Duranton C., Attali B., Barhanin J., Sandoz G. KCNE1 is an auxiliary subunit of two distinct ion channel superfamilies. Cell. 2021. 184:534-544.e11. doi: 10.1016/j.cell.2020.11.047.
 
2020
  • Laurain A., Rubera I., Duranton C., Rutsch F., Nitschke Y., Ray E., Vido S., Sicard A., Lefthériotis G., Favre G. (2020) Alkaline Phosphatases Account for Low Plasma Levels of Inorganic Pyrophosphate in Chronic Kidney Disease. Front Cell Dev Biol. 8:586831. doi: 10.3389/fcell.2020.586831
  • Munro P, Dufies O, Rekima S, Loubat A, Duranton C, Boyer L, Pisani DF. Modulation of the inflammatory response to LPS by the recruitment and activation of brown and brite adipocytes in mice. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2020 Nov 1;319(5):E912-E922. doi: 10.1152/ajpendo.00279.2020.
  • Fagnen C., Bannwarth L., Oubella I., Forest E, De Zorzi R., De Araujo A., Mhoumadi Y., Bendahhou S., Perahia D., Vénien-Bryan C. (2020) New Structural insights into Kir channel gating from molecular simulations, HDX-MS and functional studies. Sci Rep. 10:8392. doi: 10.1038/s41598-020-65246-z
  • Bassani I, Rancurel C, Pagnotta S, Orange F, Pons N, Lebrigand K, Panabières F, Counillon L, Noblin X, Galiana E. Transcriptomic and Ultrastructural Signatures of K+-Induced Aggregation in Phytophthora parasitica Zoospores. Microorganisms. 2020 Jul 7;8(7):1012. doi: 10.3390/microorganisms8071012.
  • Bourourou M, Gouix E, Melis N, Friard J, Heurteaux C, Tauc M, Blondeau N. Inhibition of eIF5A hypusination pathway as a new pharmacological target for stroke therapy. J Cereb Blood Flow Metab. 2020 Jul 2:271678X20928882. doi: 10.1177/0271678X20928882.
  • Legrand A., Pujol C., Durand C.M., Mesnil A., Rubera I., Duranton C., Zuily S., Sousa A.B., Renaud M., Boucher J.L., Pietrancosta N., Adham S., Orssaud C., Marelli C., Casali C., Ziccardi L., Villain N., Ewenczyk C., Durr A., Mignot C., Stevanin G., Billon C., Hureaux M., Jeunemaitre X, Goizet C., Albuisson J. J. (2020) Pseudoxanthoma Elasticum overlaps Hereditary Spastic Paraplegia Type 56. Intern Med. doi: 10.1111/joim.13193.
  • Tabka H., Cheikh A., Maatoug S., Ayeb M.E., Bendahhou S., Benkhalifa R. (2020) First Evidence of Kv3.1b Potassium Channel Subtype Expression during Neuronal Serotonergic 1C11 Cell Line Development. I. J. Mol. Sci. 21: 7175- doi: 10.3390/ijms21197175
  • Roux CH, Pisani DF, Gillet P, Fontas E, Yahia HB, Djedaini M, Ambrosetti D, Michiels JF, Panaia-Ferrari P, Breuil V, Pinzano A, Amri EZ. Oxytocin Controls Chondrogenesis and Correlates with Osteoarthritis. Int J Mol Sci. 2020 May 31;21(11):3966. doi: 10.3390/ijms21113966.
  • Giraud S, Kerforne T, Zely J, Ameteau V, Couturier P, Tauc M, Hauet T. The inhibition of eIF5A hypusination by GC7, a preconditioning protocol to prevent brain death-induced renal injuries in a preclinical porcine kidney transplantation model. Am J Transplant. 2020 Dec;20(12):3326-3340. doi: 10.1111/ajt.15994.
  • Rolver MG, Elingaard-Larsen LO, Andersen AP, Counillon L, Pedersen SF. Pyrazine ring-based Na+/H+ exchanger (NHE) inhibitors potently inhibit cancer cell growth in 3D culture, independent of NHE1. Sci Rep. 2020 Apr 2;10(1):5800. doi: 10.1038/s41598-020-62430-z.
  • Tauc M. Un nouveau paradigme dans le traitement de l’ischémie - L’apport de la drosophile [A new paradigm in the treatment of ischemia. Learning from drosophila]. Med Sci (Paris). 2020 Feb;36(2):147-152. French. doi: 10.1051/medsci/2020012. Epub 2020 Mar 4. PMID: 32129751.
  • Nicolas S, Rochet N, Gautier N, Chabry J, Pisani DF. The adiponectin receptor agonist AdipoRon normalizes glucose metabolism and prevents obesity but not growth retardation induced by glucocorticoids in young mice. Metabolism. 2020 Feb;103:154027. doi: 10.1016/j.metabol.2019.154027.
  • Dumortier O, Fabris G, Pisani DF, Casamento V, Gautier N, Hinault C, Lebrun P, Duranton C, Tauc M, Dalle S, Kerr-Conte J, Pattou F, Prentki M, Van Obberghen E. microRNA-375 regulates glucose metabolism-related signaling for insulin secretion. J Endocrinol. 2020 Jan 1;244(1):189-200. doi: 10.1530/JOE-19-0180.
  • Thallas-Bonke V, Tan SM, Lindblom RS, Snelson M, Granata C, Jha JC, Sourris KC, Laskowski A, Watson A, Tauc M, Rubera I, Zheng G, Shah AM, Harris DCH, Elbatreek MH, Kantharidis P, Cooper ME, Jandeleit-Dahm K, Coughlan MT. Targeted deletion of NADPH-Oxidase Nox4 from proximal tubules is dispensable for diabetic kidney disease development. Nephrol Dial Transplant. 2020 Dec 24:gfaa376. doi: 10.1093/ndt/gfaa376.
2019
  • Friard J, Corinus A, Cougnon M, Tauc M, Pisani DF, Duranton C, Rubera I. LRRC8/VRAC channels exhibit a noncanonical permeability to glutathione, which modulates epithelial-to-mesenchymal transition (EMT). Cell Death Dis. 2019 Dec 5;10(12):925. doi: 10.1038/s41419-019-2167-z.
  • Arhatte M., Gunaratne G.S., El Boustany C, Kuo I.Y., Moro C., Duprat F., Plaisant M., Duval H., Li D., Picard N., Couvreux A., Duranton C., Rubera I., Pagnotta S., Lacas-Gervais S., Ehrlich B.E., Marchant J.S., Savage A.M., Van Eeden F.J.M., Wilkinson R.N., Demolombe S., Honoré E., Patel A. (2019) TMEM33 regulates intracellular calcium homeostasis in renal tubular epithelial cells. Nat Commun;10(1):2024. doi: 10.1038/s41467-019-10045-y.
  • Bouderlique E., Tang E., Perez J., Coudert A., Bazin D., Verpont MC, Duranton C., Rubera I., Haymann JP., Leftheriotis G., Martin L., Daudon M. and Letavernier E. (2019) Vitamin D and calcium supplementation accelerates Randall’s plaque formation in a murine model. Am J Pathol 189 (11), 2171-2180. doi: 10.1016/j.ajpath.2019.07.013
  • Leboucher A, Bermudez-Martin P, Mouska X, Amri EZ, Pisani DF, Davidovic L. Fmr1-Deficiency Impacts Body Composition, Skeleton, and Bone Microstructure in a Mouse Model of Fragile X Syndrome. Front Endocrinol (Lausanne). 2019 Oct 2;10:678. doi: 10.3389/fendo.2019.00678.
  • Pedersen SF, Counillon L. The SLC9A-C Mammalian Na+/H+ Exchanger Family: Molecules, Mechanisms, and Physiology. Physiol Rev. 2019 Oct 1;99(4):2015-2113. doi: 10.1152/physrev.00028.2018.
  • Li XC, Zhu D, Chen X, Zheng X, Zhao C, Zhang J, Soleimani M, Rubera I, Tauc M, Zhou X, Zhuo JL. Proximal Tubule-Specific Deletion of the NHE3 (Na+/H+ Exchanger 3) in the Kidney Attenuates Ang II (Angiotensin II)-Induced Hypertension in Mice. Hypertension. 2019 Sep;74(3):526-535. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.119.13094.
  • Fabris G, Dumortier O, Pisani DF, Gautier N, Van Obberghen E. Amino acid-induced regulation of hepatocyte growth: possible role of Drosha. Cell Death Dis. 2019 Jul 22;10(8):566. doi: 10.1038/s41419-019-1779-7.
  • Roger E, Dumortier O, Pisani DF, Gautier N, Van Obberghen E, Hinault C. Argonaute-2 is associated to brown adipose tissue activation. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2019 Sep 1;1865(9):2393-2402. doi: 10.1016/j.bbadis.2019.05.018. Epub 2019 May 30.
  • Melis N, Thuillier R, Steichen C, Giraud S, Sauvageon Y, Kaminski J, Pelé T, Badet L, Richer JP, Barrera-Chimal J, Jaisser F, Tauc M, Hauet T. Emerging therapeutic strategies for transplantation-induced acute kidney injury: protecting the organelles and the vascular bed. Expert Opin Ther Targets. 2019 Jun;23(6):495-509. doi: 10.1080/14728222.2019.1609451.
  • Colson C, Ghandour RA, Dufies O, Rekima S, Loubat A, Munro P, Boyer L, Pisani DF. Diet Supplementation in ω3 Polyunsaturated Fatty Acid Favors an Anti-Inflammatory Basal Environment in Mouse Adipose Tissue. Nutrients. 2019 Feb 20;11(2):438. doi: 10.3390/nu11020438.
  • Leboucher A, Pisani DF, Martinez-Gili L, Chilloux J, Bermudez-Martin P, Van Dijck A, Ganief T, Macek B, Becker JAJ, Le Merrer J, Kooy RF, Amri EZ, Khandjian EW, Dumas ME, Davidovic L. The translational regulator FMRP controls lipid and glucose metabolism in mice and humans. Mol Metab. 2019 Mar;21:22-35. doi:10.1016/j.molmet.2019.01.002.
2018
  • Pini J., Giuliano S., Matonti J., Gannoun L., Simkin D., Rouleau M., and Bendahhou S. (2018) Osteogenic and chondrogenic master genes expression is dependent on the Kir2.1 potassium channel through the bone morphogenetic protein pathway. J. Bone Miner. Res. 33:1826-1841.
  • Li XC, Soleimani M, Zhu D, Rubera I, Tauc M, Zheng X, Zhang J, Chen X, Zhuo JL. Proximal Tubule-Specific Deletion of the NHE3 (Na+/H+ Exchanger 3) Promotes the Pressure-Natriuresis Response and Lowers Blood Pressure in Mice. Hypertension. 2018 Dec;72(6):1328-1336. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.118.10884.
  • Grasset E.M,, Bertero T, Bozec A., Friard J., Bourget I., Pisano S., Lecacheur M., Maiel M., Bailleux C., Emelyanov A., Ilie M., Hofman P., Meneguzzi G., Duranton C., Bulavin D.V., Gaggioli C.(2018) Matrix Stiffening and EGFR Cooperate to Promote the Collective Invasion of Cancer Cells. Cancer Res. 78:5229-5242. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-18-0601.
  • Babaei R, Schuster M, Meln I, Lerch S, Ghandour RA, Pisani DF, Bayindir-Buchhalter I, Marx J, Wu S, Schoiswohl G, Billeter AT, Krunic D, Mauer J, Lee YH, Granneman JG, Fischer L, Müller-Stich BP, Amri EZ, Kershaw EE, Heikenwälder M, Herzig S, Vegiopoulos A. Jak-TGFβ cross-talk links transient adipose tissue inflammation to beige adipogenesis. Sci Signal. 2018 Apr 24;11(527):eaai7838. doi: 10.1126/scisignal.aai7838. PMID: 29692363.
  • Sagiv A, Bar-Shai A, Levi N, Hatzav M, Zada L, Ovadya Y, Roitman L, Manella G, Regev O, Majewska J, Vadai E, Eilam R, Feigelson SW, Tsoory M, Tauc M, Alon R, Krizhanovsky V. p53 in Bronchial Club Cells Facilitates Chronic Lung Inflammation by Promoting Senescence. Cell Rep. 2018 Mar 27;22(13):3468-3479. doi: 10.1016/j.celrep.2018.03.009. PMID: 29590616.
  • Barquissau V, Léger B, Beuzelin D, Martins F, Amri EZ, Pisani DF, Saris WHM, Astrup A, Maoret JJ, Iacovoni J, Déjean S, Moro C, Viguerie N, Langin D. Caloric Restriction and Diet-Induced Weight Loss Do Not Induce Browning of Human Subcutaneous White Adipose Tissue in Women and Men with Obesity. Cell Rep. 2018 Jan 23;22(4):1079-1089. doi: 10.1016/j.celrep.2017.12.102.
  • Ghandour RA, Colson C, Giroud M, Maurer S, Rekima S, Ailhaud G, Klingenspor M, Amri EZ, Pisani DF. Impact of dietary ω3 polyunsaturated fatty acid supplementation on brown and brite adipocyte function. J Lipid Res. 2018 Mar;59(3):452-461. doi: 10.1194/jlr.M081091.
  • Poulin H., Gosselin-Badaroudine P., Vicart S., Habbout K., Sternberg D., Giuliano S., Fontaine B., Bendahhou S., Nicole S., and Chahine M. (2018). Substitutions of the S4DIV R2 residue (R1451) in Nav1.4 lead to complex forms of paramyotonia congenita and periodic paralyses. Sci. Rep. 8: 2041. doi: 10.1038/s41598-018-20468-0.
  • Simkin D., Robin G., Giuliano S., Vukolic A., Moceri M., Guy N., Wagner K.-D., Lacampagne A., Allard B., Bendahhou S. (2018) Andersen’s syndrome mutants produce a knockdown of inwardly rectifying K+ channel in mouse skeletal muscle in vivo. Cell Tissue Res. 37: 309-323.
  • Pisani DF, Barquissau V, Chambard JC, Beuzelin D, Ghandour RA, Giroud M, Mairal A, Pagnotta S, Cinti S, Langin D, Amri EZ. Mitochondrial fission is associated with UCP1 activity in human brite/beige adipocytes. Mol Metab. 2018 Jan;7:35-44. doi: 10.1016/j.molmet.2017.11.007.
2017
  • Melis N, Rubera I, Cougnon M, Giraud S, Mograbi B, Belaid A, Pisani DF, Huber SM, Lacas-Gervais S, Fragaki K, Blondeau N, Vigne P, Frelin C, Hauet T, Duranton C, Tauc M. Targeting eIF5A Hypusination Prevents Anoxic Cell Death through Mitochondrial Silencing and Improves Kidney Transplant Outcome. J Am Soc Nephrol. 2017 Mar;28(3):811-822. doi: 10.1681/ASN.2016010012.
  • Friard J, Tauc M, Cougnon M, Compan V, Duranton C, Rubera I. Comparative Effects of Chloride Channel Inhibitors on LRRC8/VRAC-Mediated Chloride Conductance. Front Pharmacol. 2017 May 31;8:328. doi: 10.3389/fphar.2017.00328.PMID: 28620305; PMCID: PMC5449500.
  • Cophignon A, Poët M, Monet M, Tauc M, Counillon L. CD95-Mediated Proton Regulation. Methods Mol Biol. 2017 ;1557:95-102. doi: 10.1007/978-1-4939-6780-3_9. PMID: 28078585.
  • Barquissau V, Ghandour RA, Ailhaud G, Klingenspor M, Langin D, Amri EZ, Pisani DF. Control of adipogenesis by oxylipins, GPCRs and PPARs. Biochimie. 2017 May;136:3-11. doi: 10.1016/j.biochi.2016.12.012.
  • Dumortier O, Roger E, Pisani DF, Casamento V, Gautier N, Lebrun P, Johnston H, Lopez P, Amri EZ, Jousse C, Fafournoux P, Prentki M, Hinault C, Van Obberghen E. Age-Dependent Control of Energy Homeostasis by Brown Adipose Tissue in Progeny Subjected to Maternal Diet-Induced Fetal Programming. Diabetes. 2017 Mar;66(3):627-639. doi: 10.2337/db16-0956.